美國的科研人員通過對TTF-1的調控發現，TTF-1能直接調節血管內皮生長因子（VEGF），并且發現VEGF啟動子上有多處TTF-1響應序列。 比如，VEGF的主要受體，VRGFR2顯示出收到TTF-1的直接正調節。本文中顯示，低氧并沒有促進 TTF-1+肺癌細胞中的VEGF的表達。而采用外泌體培養基或者是去外泌體的培養基（EDM）時，TTF-1都能促進VEGF表達。但在研究中意外的發現TTF-1+肺癌細胞的去外泌體培養基（EDM-TTF-1+）能夠內皮細胞的血管形成。
研究人員采用HUVECs，鋪在基質膠上，加入EDM以及VEGFR1等蛋白質后孵育2-3小時，對比不同條件下的分枝數和節點數。
Thyroid Transcription Factor 1 Reprograms Angiogenic Activities of Secretome
L. Wood, N. Cox, C. Phelps, S. Lai, A. Poddar, C. Talbot and D. Mu
Scientific Reports, 2016, 10.1038/srep19857
（一）實驗材料和實驗方法
1）細胞： HUVECs 104 cells/50μl
2）培養基： RPMI
3）基質膠： Basement membrane (Fisher Scientific, CB40234A) 10 µl per well
4) 試劑： A549 conditioned media (EDM)
Recombinant human GM-CSF protein（250ng/ml，Peprotech，300-03）
sVEGFR1 protein（20 ng/ml, RayBiotech,ELH-VEGFR1)
Anti-GM-CSF antibody (R&D systems. MAB215)
Anti-VEGFR1 antibody (R&D systems. AF321)
5）耗材： ibidi血管生成載玻片 (ibidi, 81506)
6）其他： 細格紙
（二）實驗步驟
1）準備基質膠
① 將10μl的Basement membrane以5mg/ml的濃度鋪入ibidi血管生成載玻片的內孔中，注意槍頭要垂直于內孔的正上方加入Matrigel，防止有Matrigel流經上孔而留下殘留膠。
② 蓋上ibidi血管生成載玻片的蓋子。
③ 準備一個10cm的培養皿，放入浸過水的紙巾，制成一個濕盒。
④ 將ibidi血管生成載玻片放入培養皿中，蓋上培養皿蓋。
⑤ 37℃至少孵育30分鐘，使基質膠完全固化。
怎么知道加了合適體積的Matrigel：
由于Matrigel流動性不強，并且有可能移液槍不準確，有可能10μl的膠不能填滿ibidi血管生成載玻片的下孔，這樣，必然會影響到實驗的成像結果。這時用一張格子紙就能知道移液槍調整到多少能正好把下孔填滿。
如上圖所示，垂直透過每個孔看下面的格子紙，如果格子被縮小了，那么就說明膠沒加滿，格子被放大了，那么膠就加多了，格子沒發生什么變形，這才是剛剛加滿下孔的狀態。
3）鋪細胞
① 在培養好的HUVECs細胞的60mm培養皿中加入5μg 的 Calcein-AM，染色45分鐘。
② 胰酶消化細胞制成懸液，每孔種10000個細胞即可。準備密度為2*105cells/ml的細胞懸液，充分混勻。
③ 將膠已經凝固的ibidi血管生成載玻片從濕盒中取出。
④ 每孔加入50μl的細胞懸液，注意保持槍頭垂直在上孔的上方，不要接觸下孔的凝膠。可以使用排槍。
⑤ 同樣用格子紙查看是不是加了足夠量的液體，如果沒有，加入無細胞的培養基，使上孔液體正好加滿。
⑥ 蓋上蓋，靜置，一段時間后，所有細胞都會沉下去落在Matrigel的表面。
4）不同培養基處理
采用EDM-EV，EDM-HDD，EDM-TTF-1處理細胞，并分別加入 rGM-CSF和rsVEGFR1，以Goat Ab和 Mouse Ab作為對照。37℃，培養2-3小時。
5）采集圖像并統計結果
使用尼康TS100顯微鏡的40倍鏡采集圖像，并且用 ImageJ對其分枝數和節點數進行測量和統計。
三）實驗結果
如圖所示，使用EDM-TTF1處理的HUVECs血管生成被顯著的壓制。當加入GM-CSF和VEGFR1后，血管生成也被顯著的壓制，但當加入GM-CSF和VEGFR1的抗體后，血管生成的壓制也被取消，細胞又顯出很強的血管生成結果。說明TTF-1上調了GM-CSF和VEGFR1的表達，壓制了血管生成的進程。
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